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            Mg2+- ATP 酶試劑盒,微板法

            更新時間:2024-06-20

            簡要描述:

            Mg2+- ATP 酶試劑盒,微板法
            Mg2+-ATP 酶與細胞維持胞內 Mg2+濃度有關, 可在運輸 Mg2+的同時催化 ATP 水解生 成 ADP 和無機磷。通過測定無機磷的量可確定該酶活性高低。

            Mg2+- ATP 酶試劑盒,微板法

            Mg2+- ATP 酶試劑盒,微板法

            本試劑盒僅供科研使用 1 Mg2+ - ATP 酶活性測定說明書 (貨號:WS0980W 微板法 48 樣) 一、產品簡介: Mg2+-ATP 酶與細胞維持胞內 Mg2+濃度有關, 可在運輸 Mg2+的同時催化 ATP 水解生 ADP 和無機磷。通過測定無機磷的量可確定該酶活性高低。 二、所需的儀器和用品: 酶標儀、96 孔板、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、研缽、冰和蒸餾水。 三、試劑盒的組成和配制: 【注】:全程操作需無磷環境;試劑配置用新的槍頭和玻璃移液器等,也可以用一次性塑料器皿,避 免磷污染。 四、Mg2+-ATP 酶活性檢測: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實驗 樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: ① 組織樣本:稱取約 0.1g 組織,加入 1mL 提取液,進行冰浴勻漿。 4℃×12000rpm 10min,取上清,置冰上待測。 【注】:若增加樣本量,可按照組織質量(g):提取液體積(mL)15~10 的比例進行提取。 ② 細菌/細胞樣本: 先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;取約 500 萬細菌或細胞加入 1mL 提取液,超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次); 12000rpm 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。 【注】:若增加樣本量,可按照細菌/細胞數量(104):提取液(mL)500~10001 的比例進行提取。 ③ 液體樣本:直接檢測;若渾濁,離心后取上清檢測。 2、上機檢測: ① 酶標儀預熱 30min 以上,調節波長至 700nm,所有試劑解凍至室溫(25℃)。 ② 在 EP 管中依次加入: 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 提取液 90mL×1 4℃保存 試劑一 粉體 mg×1 4℃保存 用前甩幾下使試劑落入底部,再加 20mL 提取液,混勻溶解備用。 試劑二 粉體×1 -20℃保存 用前甩幾下使試劑落入底部,再加 15mL 提取液,混勻溶解備用。 試劑三 液體 5mL×1 4℃保存 試劑四 A:粉體 mg×1 B:液體 1mL×1 4℃保存 臨用前向 A 試劑中加 0.9mL B 液, 再加 11.6mL 的蒸餾水,混勻溶解備用。 標準品 粉體 mg×1 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑。 試劑名稱(μL測定管 對照管 試劑一 100 100 試劑二 100 蒸餾水 100 樣本 100 100 37℃ 孵育 20min本試劑盒僅供科研使用 2 ③ 顯色反應(在 96 孔板中操作): 五、結果計算: 1、標準曲線方程:y = 1.5677x - 0.0038,x 是標準品摩爾質量(μmol/mL, y A2、按蛋白濃度計算: 定義:每小時每毫克組織蛋白分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 酶活力(μmol/h/mg prot)=[(A+0.0038)÷1.5677×V2]÷(V1×Cpr)÷T =6.7×(A+0.0038)÷Cpr 3、按樣本鮮重計算: 定義:每小時每克組織分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 酶活力(μmol/h/g 鮮重)=[(A+0.0038)÷1.5677×V2]÷(W×V1÷V)÷T =6.7×(A+0.0038)÷W 4、按細菌或細胞密度計算: 定義:每小時每 1 萬個細菌或細胞分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 酶活力(μmol/h/104 cell)=[(A+0.0038)÷1.5677×V2]÷(500×V1÷V)÷T =0.0134×(A+0.0038) 5、液體中酶活力計算: 定義:每小時每毫升液體分解 ATP 產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 酶活力(μmol/h/mL)=[(A+0.0038)÷1.5677×V2]÷V1÷T=6.7×(A+0.0038) V---加入提取液體積,1mLV1---加入樣本體積,0.1mL ; V2---酶促反應總體積,0.35mLT---反應時間,1/3 小時; W---樣本鮮重,g500---細菌或細胞總數,500 萬。 Cpr---樣本蛋白質濃度,mg/mL;建議使用本公司的蛋白含量檢測試劑盒。 附:標準曲線制作過程: 1 制備標準品母液(5μmol/mL):標準品用 10mL 蒸餾水溶解。(母液需在兩天內用)。 2 把母液稀釋成六個濃度梯度的標準品:0, 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5. μmol/mL。也可根據實 際樣本來調整標準品濃度。 3 依據顯色反應階段測定管的加樣體系操作,根據結果即可制作標準曲線。 試劑三 50 50 混勻,12000rpm,4℃離心 5min,上清液待測 上清液 150 150 試劑四 100 100 混勻,室溫靜置 10min,700nm 下讀取各管吸光值, A=A 測定-A 對照(每個樣本做一個自身對照)。

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